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懸浮細(xì)胞的電融合轉(zhuǎn)染技術(shù)簡介

 更新時間:2024-04-29 點擊量:611

懸浮細(xì)胞的電融合轉(zhuǎn)染技術(shù)
融合懸浮細(xì)胞的步驟與電穿孔的很類似,只是在進(jìn)行高強度的電場脈沖前后,必須用低幅、高頻電場使細(xì)胞排成一條鏈。
1 用融合介質(zhì)(FM)洗懸浮細(xì)胞兩次,然后懸于FM中。洗滌細(xì)胞時,在臺式離心機上1000rpm下離心3分鐘,得到細(xì)胞沉淀,棄去上清液將細(xì)胞懸于新鮮FM介質(zhì)中。
2 將懸浮細(xì)胞轉(zhuǎn)移到相應(yīng)的融合室內(nèi)。假如要使兩種不同的細(xì)胞彼此融合,轉(zhuǎn)移前要充分混合。
3 啟動介電電泳場,其振幅通常小于200V/cm,頻率在2MHz以內(nèi),用顯微鏡檢測細(xì)胞是否排成一條鏈,調(diào)節(jié)振幅和頻率以達(dá)到最佳效果。
4 讓介電電泳場開約1分鐘后關(guān)掉,立即應(yīng)用融合脈沖,其振幅數(shù)量級為1kV/cm。脈沖寬度小于1ms。在進(jìn)行融合脈沖后立即再次啟動介電電泳場,常規(guī)讓其開啟約2分鐘。
5 關(guān)掉介電電泳場,讓細(xì)胞在樣品池中靜置10分鐘。
6 去掉FM,用普通培養(yǎng)基再次洗滌細(xì)胞。
7 將細(xì)胞轉(zhuǎn)移到培養(yǎng)皿,加入普通培養(yǎng)基,在培養(yǎng)箱一般條件下培養(yǎng)。

[注意事項]
1 適宜組分依使用的特定細(xì)胞種類而有變化。如果努力優(yōu)化電壓和脈沖寬度電穿孔結(jié)果仍不令人滿意,就應(yīng)嘗試改變穿孔介質(zhì)。
2 影響電穿孔/電融合的另一重要因素與細(xì)胞狀態(tài)有關(guān),為達(dá)到高效率,必須收集對數(shù)生長中期的細(xì)胞。
1.純化siRNA
在轉(zhuǎn)染前要確認(rèn)siRNA的大小和純度。為得到高純度的siRNA,推薦用玻璃纖維結(jié)合,洗脫或通過15-20%丙烯酰胺膠除去反應(yīng)中多余的核苷酸,小的寡核苷酸,蛋白和鹽離子。注意:化學(xué)合成的RNA通常需要跑膠電泳純化(即PAGE膠純化)。
2.避免RNA酶污染
微量的RNA酶將導(dǎo)致siRNA實驗失敗。由于實驗環(huán)境中RNA酶普遍存在,如皮膚,頭發(fā),所有徒手接觸過的物品或暴露在空氣中的物品等,此保證實驗每個步驟不受RNA酶污染非常重要。
3.健康的細(xì)胞培養(yǎng)物和嚴(yán)格的操作確保轉(zhuǎn)染的重復(fù)性
通常,健康的細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率較高。此外,較低的傳代數(shù)能確保每次實驗所用細(xì)胞的穩(wěn)定性。為了優(yōu)化實驗,推薦用50代以下的轉(zhuǎn)染細(xì)胞,否則細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率會隨時間明顯下降。
4.避免使用抗生素
抗生素會在穿透的細(xì)胞中積累毒素。有些細(xì)胞和轉(zhuǎn)染試劑在siRNA轉(zhuǎn)染時需要無血清的條件。這種情況下,可同時用正常培養(yǎng)基和無血清培養(yǎng)基做對比實驗,以得到最佳轉(zhuǎn)染效果。
5.選擇合適的轉(zhuǎn)染試劑
針對siRNA制備方法以及靶細(xì)胞類型的不同,選擇好的轉(zhuǎn)染試劑和優(yōu)化的操作對siRNA實驗的成功至關(guān)重要。
 6.通過合適的陽性對照優(yōu)化轉(zhuǎn)染和檢測條件
對大多數(shù)細(xì)胞,看家基因是較好的陽性對照。將不同濃度的陽性對照的siRNA轉(zhuǎn)入靶細(xì)胞(同樣適合實驗靶siRNA),轉(zhuǎn)染48小時后統(tǒng)計對照蛋白或mRNA相對于未轉(zhuǎn)染細(xì)胞的降低水平。過多的siRNA將導(dǎo)致細(xì)胞毒性以至死亡。
7.通過標(biāo)記siRNA來優(yōu)化實驗
熒光標(biāo)記的siRNA能用來分析siRNA穩(wěn)定性和轉(zhuǎn)染效率。標(biāo)記的siRNA還可用作siRNA胞內(nèi)定位及雙標(biāo)記實驗(配合標(biāo)記抗體)來追蹤轉(zhuǎn)染過程中導(dǎo)入了siRNA的細(xì)胞,將轉(zhuǎn)染與靶蛋白表達(dá)的下調(diào)結(jié)合起來。


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